ELISA实验总翻车?深度剖析失败原因,威奥生物助你搞定数据,轻松发表Cell期刊
发布时间:2025-10-09 10:41 | 点击次数:312
做ELISA实验时,数据忽高忽低?重复性差?空白值异常?别急!可能是操作、试剂、仪器、样本中的某个环节出了问题!
📢 本期文章带你深度剖析ELISA失败原因,从加样误差、洗板不当,到试剂失效、样本干扰,手把手教你排查问题,助你轻松搞定重复性难题!
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ELISA 即酶联免疫吸附测定,是一类常用的免疫酶技术。主要方法是将已知的抗原或抗体吸附在固相载体表面,然后利用酶标记(偶联)的抗体或抗原与之孵育,加入显色剂显色,通过酶标仪测定待测物颜色与标准物颜色的差异,绘制出酶活曲线得出待测物浓度。
ELISA可用于测定抗原,也可用于测定抗体。ELISA实验中有三种必要的试剂:
① 固相的抗原或抗体(用于结合到固相载体上)
② 标记的抗原或抗体(标记物)
③ 作用的底物(显色剂,用于显色)
| 要成功的实施 ELISA需要走过七道山谷 |
| 1.成功采集到样品; |
| 2.样品保存妥当; |
| 3.成功复温样品,确保没有降解; |
| 4.试剂盒质量没问题; |
| 5.成功做出标准曲线; |
| 6.操作过程没有出现差错,编号没有混乱; |
| 7.显色之后颜色明显,且在检测范围以内, |
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试剂盒运输时间过长,受高温天气影响,酶的活性降低。 |
试剂运输过程加放足够冰袋并尽可能缩短运输时间。 |
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试剂盒(包括未用完的板条及其他组分)保藏条件不正确。 |
试剂盒内所有组分都应当在4℃冷藏,未使用完的板条要密封保存。 |
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试剂盒使用时已超出有效期。 | 过期试剂盒不可以使用。 |
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温育时间不够。 | 严格按照说明书操作。 |
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恒温箱温度达不到37℃。 |
1)经常注意水箱中合适的水位。 2)在保证水不没过酶标板的前提下,使水位尽量高,以保证反应温度。 3)注意控制恒温箱温度,尽可能让其稳定在37±0.5℃。尽量避免频繁开关恒温箱门。 |
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对先加样后加酶的操作,加酶时要注意吸头不要接触标本,造成污染。当可能造成污染时,一定要更换吸头。 |
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注意控制恒温箱温度,尽可能让其稳定在 37±0.5°C。 |
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整个操作时间过长、造成反应时间不同(第一孔与最后一孔反应时间相差很悬殊)。气温高时更 明显。 |
在尽可能短的时间内完成操作。尽量不要堆积多块板子操作(尤其手工操作时)。 |
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洗板时,垂直加入洗液,保证一定的冲击力:洗液要注满板孔,并保证30-60秒的浸泡时间。 |
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防止组分的污染。如使用容器,注意容器的清洁。 |
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加样误差,手动加样体积不一致(如移液器使用不当)、枪头残留、样本未混匀。 |
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洗板不充分或过度:洗涤次数、浸泡时间、孔内残留液体量不一致,导致背景信号波动。 |
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孵育条件不稳定:温度不均(如酶标板边缘与中心温差)、时间不准确、湿度不足(液体蒸发)。 |
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试剂质量或保存不当:抗体/酶结合物活性降低、标准品降解、缓冲液污染或pH变化。 |
分装保存试剂(避免反复冻融),使用前检查有效期。标准品需现配现用,避免长时间放置。 |
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试剂未平衡至室温:低温试剂直接使用可能导致孔间反应速率差异。 |
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酶标仪性能问题:滤光片波长偏差、光路污染、校准失效。 |
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微孔板质量问题:板间或板内孔间吸附性能不均(如边缘效应)。 |
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样本处理不当:溶血、脂血、反复冻融、离心不彻底(残留颗粒)。 |
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基质效应原因:样本类型差异(如血清vs血浆)或含有干扰物质(如异嗜性抗体)。 |
稀释样本或使用基质校准品。对高背景样本进行阻断处理。 |
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实验设计问题原因:标准曲线范围不合理、复孔数量不足(建议至少双孔)。 |
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环境干扰原因:实验台振动、强光照射酶底物(如TMB)。 |
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忘记加酶 |
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忘记加显色液 |
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酶或A、B液被污染失效 |
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把终止液当A液 |
注意液体组分加样顺序。 |
上海威奥生物生产的ELISA试剂盒采用“夹心法”,将捕获抗体包被于酶标板上,捕获样品及标准品中的靶蛋白,生物素化的检测抗体与靶蛋白结合, SABC复合物与生物素化检测抗体结合,形成免疫复合物,加入TMB显色液后,若反应孔中有靶蛋白则显蓝色,加入终止液变黄色,检测过程中未结合的成分均被洗去,用酶标仪在450 nm处测OD值,靶蛋白浓度与OD值之间呈正比,通过绘制标准曲线计算出标本中靶蛋白的浓度,从而对检测样品进行定性或相对定量分析。

1. 加样:空白孔加入 50μl 标准品/样品稀释液,其余孔各对应加入标准品或待测样品 50μl,贴上封板胶纸,将反应板混匀后置 37℃,50 分钟。
标准品配制:取8个1.5ml离心管,分别标注S1,S2,S3,S4,S5,S6,S7,Blank,第一管S1中加入标准品/样品稀释液900μl,S2至Blank中分别加入标准品/样品稀释液200μl,在第一管S1中加入标准品S(10×)溶液100μl置于漩涡混合器上混匀后用加样器吸出200μl,移至S2,如此反复作对倍稀释至S7,混匀,Blank为空白对照。(标准品的用量也可根据自己需要配置)
2. 洗板:用 1×洗涤液将反应板充分洗涤3次,每孔加入 1×洗液 300μl,每次震荡/浸泡 1-2 分钟,向滤纸上印干。
洗涤液配置:用蒸馏水1:30稀释(例:1ml 浓缩洗涤液加入 29ml 的蒸馏水)。
3. 加抗体:空白孔加入 100μl 生物素化抗体稀释液,其余孔各加入 1×的生物素化抗体工作液100μl,贴上封板胶纸,混匀后置 37℃,50 分钟。
生物素化抗体工作液配置:使用前20分钟,用生物素化抗体稀释液将 100×生物素化抗体稀释成 1×工作液,根据所需用量配置,当日使用,剩余弃之。
4. 洗板:同上。
5. 加SABC:每孔加入 SABC 复合物工作液 100μl,贴上封板胶纸,混匀后置 37℃,30 分钟。
SABC复合物工作液配置:使用前20分钟,用SABC复合物稀释液将100×浓缩SABC复合物稀释成1×工作液,当日使用,剩余弃之。
6. 洗板:同上。
7. 加显色液:每孔加入提前配置好的 TMB 混合液100μl,混匀后贴上封板胶纸,置于37℃暗处反应10-20分钟(具体显色时间根据显色结果而定)。
TMB 显色液的配置:使用前10分钟,将TMB显色液 A 液和 B 液 1:1 混合,避光放置备用。
8.加终止液:每孔加入50μl终止液,混匀,30分钟内用酶标仪在450nm处测吸光值。
小提示:
1.如果您检测的样本中靶蛋白浓度高于标准品最高值,建议重新检测,请根据实际情况,适当倍数稀释(建议做预实验,以确定稀释倍数)。
2.当标准品/样品稀释液及洗涤液不够用时,可以用 1*PBST 替代。
检测前试剂准备
1. 所有OD值建议减除空白孔值后再进行计算,如空白孔OD低于0.1,也可以直接计算。
2. 以标准品浓度作横坐标,OD 值作纵坐标,手工绘制或用软件绘制标准曲线,根据样品OD 值计算出相应含量,再乘以稀释倍数即可。








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